规格 | 价格 | 库存 |
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一 、产品详情
传代方法 | 1:2~1:4传代,每2~3天传代或换液一次。 | 冻存条件 | 细胞库无血清冻存液 |
细胞株构建流程
| 1.1.构建目的基因过表达慢病毒重组质粒,并包装慢病毒;
2.慢病毒以合适的MOI值转导靶细胞;
3.用最佳浓度药物对细胞株进行筛选,获得混合稳转细胞株;
4.稳转细胞株质检(COA)。 | ||
细胞备注 | 如混合稳转细胞株带抗性基因,建议每传8~10代用相应抗性药物筛选一次(6μg/mL);或在细胞培养过程中添加适当浓度的抗性药物以维持细胞株阳性率(0.6μg/mL)。 |
二、细胞到货处理
常温到货细胞:T25细胞培养瓶寄送活细胞(细胞处于培养液中)的处理方法
1.观察细胞培养瓶是否完好,培养液是否有漏液、浑浊等现象。若有,请拍照,并及时与技术支持联系。
2.用75%酒精擦拭细胞培养瓶表面,显微镜下观察细胞状态。若因运输问题,部分贴壁细胞从瓶壁脱落,先不要打开培养瓶盖,将细胞置于细胞培养箱内静置培养2~4小时,以便稳定细胞状态。
3.静置完成后,取出细胞培养瓶,镜检、拍照,记录细胞状态,如有异常现象,例如污染,细胞状态差等,请拍照留证并及时与技术支持联系。
4.仅留适量细胞培养液(弃去多余),然后将细胞置于37°C,5%CO2培养箱培养。
5.根据细胞习性及时换液、传代、冻存细胞。
冻存管寄送活细胞(细胞处于全血清中)的处理方法:
1.用75%酒精彻底消毒细胞冻存管,然后在超净工作台将细胞悬液转移至15mL无菌离心管,500g,室温离心5min。
2.弃血清,用完全培养基重悬细胞沉淀。
3.将细胞接种于合适的细胞培养皿或培养瓶,然后置于37°C,5%CO2培养箱培养。
4.次日观察细胞形态,如有异常现象,例如污染,细胞状态差等,请拍照留证并及时与技术支持联系。
5.根据细胞习性及时换液、传代、冻存细胞。
干冰运输细胞
1.将细胞从干冰中取出后立即置于37°C水浴,轻轻转动冻存管,直至管内细胞完全融化(最好在1~2min内解冻)。
2.将冻存管转移到超净工作台,用75%酒精彻底消毒冻存管。
三、细胞培养
1、细胞复苏将含有1mL细胞悬液的冻存管在37°C水浴中快速摇晃至溶解,然后在超净工作台将细胞转移至15mL无菌离心管,加入4mL培养基或无菌PBS混合均匀,室温,500g,离心5min,弃上清液,用完全培养基重悬细胞,将细胞移入培养瓶或培养皿培养,第二天更换培养液并检查细胞生长情况。
2、细胞传代
贴壁细胞传代:当细胞密度约80%时,可进行传代培养:吸出原培养皿中的培养基,PBS缓冲液润洗细胞两次,加2~3mL0.25%胰酶进行消化(注意根据实际情况,把握消化时间)。
镜下观察消化情况,在细胞边缘缩小,贴壁松动时(可用吸管吸起些许胰酶轻轻吹打细胞层某处,即可肉眼可见细胞层脱落,或吹打后镜下观察吹打处,即消化完成,否则继续消化)直接吸掉胰酶,加3~4mL完全培养基,轻轻吹打细胞层,把细胞层吹落,吹散。取部分细胞悬液转移至新的培养皿中,添加适当的完全培养基,把细胞悬液打匀,于培养箱中培养。
悬浮细胞传代:当细胞密度约80%时,可进行传代培养:直接将原培养液和细胞一起转移至15mL或50mL无菌离心管,400~500g室温离心5min,吸掉培养基,用新鲜完全培养基重悬细胞根据细胞生长特性,按合适比例传代细胞,将细胞悬液转移至新的培养皿或培养瓶,将细胞置于37°C培养箱中培养。
3、细胞冻存收集细胞,500g,离心5min,弃上清液,加入无血清冻存液轻轻悬浮细胞,移入冻存管后进行冻存。
使用须知
1.本产品仅供购买方单方使用,不得向任何第三方赠送、转让或销售;
2.本产品仅供实验室和体外研究使用,不能用于任何临床检验、诊断、治疗,或任何非法用途;
3.收货48h内如若发现异常,请及时联系售后,逾期视为收货良好;
4.请严格按照本说明书操作,否则造成细胞失活等情形,不予提供补发服务。