植物线粒体DNA提取试剂盒-上海雅吉生物科技有限公司

线粒体 DNA 提取的关键是尽可能的去掉核 DNA。本试剂盒利用差速离心得到比较纯净的线粒体，再利用 DNA 酶消化和裂解缓冲系统等多步骤去掉核 DNA，最后得到纯净的线粒体 DNA。可用于 PCR 等对纯度要求较高的实验。

本试剂盒用于从植物叶片中分离出完整而纯化的线粒体。适合于田间采摘或者实验室培养的植物叶片中线粒体 DNA 的提取制备。

试剂存储
本试剂盒整体保存于 2-8℃一年，Dnase I -20℃保存。使用前，在 DNase I 中加入 600ul（50T）或者 1200ul（100T）的DNA 酶反应液，分装后-20℃保存三个月，如果超过三个月，活性可能会降低，请自行订购 DNASE I。线粒体裂解液使用前常温保存，如有沉淀可 37℃水浴溶解，不影响使用。

使用参考

准备工作：：在 Dnase I 中加入 600ul（50T）或者 1100ul（100T）的 DNA 酶反应液，适当分装后-20℃保存。线粒体裂解液保存于常温，如有沉淀 37℃水浴溶解，离心机温度下降到 4℃（2-8℃），如无低温离心机，也可以常温离心，并将离心时间为 10min 的改为 5min，但最后所得 DNA 品质及产量可能会有一定影响。

1. 样本采集前处理：无论田间自然生长还是实验室组织培养，采摘前须避光生长 24-48 小时，以减少叶片组织中糖类及叶绿体含量。取适量植物细胞裂解液，加入 0.5% β-巯基乙醇，如 10ml 植物细胞裂解液加入 50ulβ-巯基乙醇，混匀，形成植物细胞裂解液/β-巯基乙醇溶液，此溶液可 2-8 度保存一个月。

2. 叶片用蒸馏水清洗 2-3 次，滤纸吸干，有条件请用液氮研磨叶片 1-2 克，研磨完后，取 800mg 左右研磨的叶片粉，加入1.5ml 预冷的植物细胞裂解液/β-巯基乙醇溶液，混匀。如果无条件（无液氮），请预冷研钵，取洗过的叶片 1000 mg，用剪刀剪为碎块放入玻璃匀浆器或者研钵中。加入 1.5ml 预冷的植物细胞裂解液/β-巯基乙醇溶液，冰上研磨至看不见明显组织块；

3. 将研磨物放置合适的离心管，4℃，1000× g 离心 5 min；

4. 将上清转移到一新的离心管中，在沉淀中加入 0.5ml 植物细胞裂解液/β-巯基乙醇溶液，混匀，再次 4℃，1000× g 离心5 min，取上清；合并两次上清，将上清 4℃ 1000× g 再次离心 5 min。

5．取上清，加入一新的离心管中，4℃， 16,000 × g 离心 10 min。离心后的上清含胞浆成分，可从中提取胞浆蛋白。将上清转移到新离心管，线粒体沉淀在管底。

6. 在线粒体沉淀中加入 0.5 mL 线粒体清洗液重悬线粒体沉淀，4℃，1000× g 离心 5 min；

7．取上清，加入一新的离心管中，4℃， 16,000 × g 离心 10 min。弃上清，高纯度的线粒体沉淀在管底；

8. 加入 100ul DNA 酶反应液重悬线粒体，吹打均匀后，再加入 10ul DNASE I 溶液（见准备工作），混匀，37℃水浴 10min。此步为消化线粒体表面吸付的核 DNA。4℃， 12,000 × g 离心 5 min。尽可能的弃上清，再加入 200ul TE 重悬线粒体沉淀，4℃，12,000 × g 离心 5 min，洗去残留的 DNA 酶。

9.得到的沉淀，用 200ul TE 缓冲液重悬线粒体沉淀，加入 10ul RNase A。加入 200ul 线粒体裂解液，轻轻混匀（不可吹打），放置 1-2min，再加入 150ul 蛋白沉淀液，迅速混匀。4℃， 12,000 × g 离心 5 min。此步骤可进一步去除核 DNA。

10．取上清，加入一新的离心管中（如用于酶切分析，可加入此步：选用等体积的酚氯仿异戊醇 25:24:1 抽提一次，再用氯仿抽提一次，或者直接用氯仿抽提两次，一般来说，此步可去掉一些微量蛋白及糖类，但会造成线粒体 DNA 的损失，因而用于 PCR 时可省，并不影响后续实验），加入 0.6 倍体积的异丙醇（如无异丙醇，可加入 2.5 倍体积的乙醇沉淀 DNA，如离心管太满可分两管）及 5-10ul 核酸核酸助沉剂，混匀，-20℃沉淀半小时左右（此步可省），4℃， 12,000 × g 离心 10 min。