产品简介:
Ø Hot-Start Taq DNA Polymerase是一种仅当温度高于45ºC时才具有DNA聚合酶活性的Taq DNA Polymerase(简称Taq酶)与其可逆抑制剂的混合物,俗称热启动Taq酶或HS Taq酶。使用本产品进行PCR反应时可以在室温操作,并能有效避免室温操作时由于普通Taq酶或其它耐热DNA聚合酶存在活性而导致的非特异性PCR背景。
Ø Hot-Start Taq DNA Polymerase是Taq酶与其可逆性抑制剂的混合物。该抑制剂可以可逆性地结合于Taq酶活性位点,当温度低于45ºC时,形成非活性的Taq酶和抑制剂的复合物,从而抑制Taq酶的活性。在常规PCR反应过程中,当温度升高至45ºC或以上时,Taq酶和其可逆性抑制剂解离,从而发挥其正常的DNA聚合酶活性。上述机制使Hot-Start Taq DNA Polymerase仅在加热到45ºC或以上时才会有酶活性,从而确保了小于45ºC时不会发生非特异性的DNA聚合反应,有效降低了PCR的非特异性背景,提高了PCR反应的准确性和精确性。
Ø 常规的DNA分离纯化操作,例如PCR纯化试剂盒或DNA凝胶回收试剂盒和乙醇沉淀等操作,都能有效去除本产品中的抑制剂,以避免可能的对于后续反应的干扰。
Ø Hot-Start Taq DNA Polymerase使用时无需额外的高温孵育步骤以释放Taq酶活性。
Ø Hot-Start Taq DNA Polymerase和普通的Taq DNA Polymerase一样,可以催化5'至3'方向的依赖于DNA模板的DNA的聚合反应,没有3'至5'的外切酶活性,最终会导致PCR产物的3'末端产生3'-dA overhangs,即产生带一个A的3'粘端,可直接用于TA 克隆。
Ø 来源:本产品使用的Taq DNA polymerase为recombinant Taq DNA Polymerase,通过大肠杆菌表达纯化获得,和纯化获得的天然Taq DNA Polymerase在各方面的性质相同。
Ø 用途:高背景和有非特异性条带的PCR,高专一性PCR(high-specificity PCR),高灵敏度PCR,生物芯片分析(microarray analysis),常规PCR,克隆PCR、TA克隆等,不建议用于荧光定量PCR (qPCR)。
Ø 活性定义:One unit of the enzyme catalyzes the incorporation of 10 nmol of deoxyribonucleotides into a polynucleotide fraction (adsorbed on DE-81) in 30 min at 70ºC. Enzyme activity is assayed in the following mixture: 67 mM Tris-HCl (pH 8.8 at 25ºC), 6.7 mM MgCl2, 1 mM 2-mercaptoethanol, 50 mM NaCl, 0.1 mg/ml BSA, 0.75 mM activated calf thymus DNA, 0.2 mM of each dNTP, 0.4 MBq/ml
Ø 纯度:不含DNA内切酶、外切酶和磷酸酯酶,不含RNA酶,满足常规PCR反应要求。
Ø 酶储存溶液:20 mM Tris-HCl (pH 8.0), 1 mM DTT, 0.1 mM EDTA, 100 mM KCl, 0.5% (v/v) Nonidet P40, 0.5% (v/v) Tween 20 and 50% (v/v) glycerol。
Ø 10X Hot-Start PCR Buffer:100 mM Tris-HCl (pH 8.8 at 25ºC), 500 mM KCl, 15mM MgCl2, 0.8% (v/v) Nonidet P40。
Ø 失活或抑制:酚氯仿抽提可以使Hot-Start Taq DNA Polymerase失活,加入脱氧胆酸钠至0.06%,SDS至0.01%,或sarkosyl至0.02%均可以抑制Hot-Start Taq DNA Polymerase。
Ø 本产品用于50微升的PCR反应体系,足够用于800个反应;用于20微升的PCR反应体系,足够用于2000个反应。
保存条件:-20ºC保存。
注意事项:
Ø 由于PCR反应非常灵敏可以扩增目的基因序列超过1000万倍,在使用Hot-Start Taq Polymerase时请注意避免微量待扩增DNA的污染,并尽量考虑设置不加模板的空白对照以确认是否有待扩增DNA的污染。
Ø Hot-Start Taq DNA polymerase在PCR过程中每循环的出错几率约为2.2×10-5,对于大于1kb的DNA片段的克隆推荐使用出错几率更低的DNA聚合酶,例如Pfu DNA polymerase、BeyoTaq DNA polymerase等。对于普通的PCR或RT-PCR定性检测或定量检测,Hot-Start Taq DNA polymerase是最佳选择。
Ø 本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
Ø 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
使用说明:
1. PCR反应体系的设置:
a. 融解并混匀PCR反应所需的各种溶液。将Hot-Start Taq DNA Polymerase置于冰浴上或冰盒内。
b. 参考下表在冰浴上设置PCR反应体系(如果有多个类似的PCR反应,可以先配制大体积的包含水、buffer、dNTP和Hot-Start Taq酶的混合物,然后分装到各PCR反应管内。根据情况,有时混合物中可以包括引物):
试剂 | 最终浓度 | 体积 |
双蒸水或Milli-Q水 | - | (36.5-x)μl |
10X Hot-Start PCR Buffer | 1X | 5μl |
dNTP (2.5mM each) | 0.2mM each | 4μl |
模板DNA | 10pg-1μg* | xμl |
引物混合物(10μM each) | 0.8μM | 4μl |
Hot-Start Taq DNA Polymerase (2.5U/μl) | 1.25U/50μl | 0.5μl |
总体积 | - | 50μl |
注意:
a.通常引物的终浓度为0.2μM时可获得良好的检测效果,也可以根据情况在0.1-1.0μM范围内调整引物的终浓度。扩增效率不高的情况下,可提高引物的浓度;发生非特异性反应时,可
降低引物浓度。
b.对不同类型的模板在50µl反应体积中推荐用量如下:哺乳动物基因组DNA:0.1-1µg;大肠杆菌基因组DNA:10-100ng;质粒DNA:0.1-10ng。过多的模板DNA容易导致非特异性PCR产物
c. 用移液器轻轻吹打混匀或轻微Vortex混匀,室温离心数秒,使液体积聚于管底。
d. 如果所使用的PCR仪有热盖则省略本步骤。如果PCR仪没有热盖,则在管内滴入一滴矿物油(mineral oil,ST275)。
e. 把设置好的PCR反应体系置于PCR仪上,开始PCR反应。
2. PCR反应参数的设置可以参考如下示例:
STEP1(起始变性): 94ºC 3min
STEP2(变性): 94ºC 30sec STEP3(退火): 55ºC 30sec STEP4(延伸): 72ºC 1min
STEP5(循环): Go To STEP2 for 30 cycles STEP6(最终延伸): 72ºC 10min
STEP7(临时保存): 4ºC forever
注意:
a. PCR反应的设置需根据模板、引物、PCR产物的长度和GC含量等条件的不同设定不同的PCR反应条件包括温度、时间和循环数等。
b. STEP4(延伸)的时间设置需根据PCR产物的长度进行设置,通常每kb产物的延伸时间为1分钟。例如PCR产物的长度为 1kb,则延伸时间可以设置为1分钟,PCR产物的长度为2kb,则延伸
时间可以设置为2分钟,以此类推。
c. 对于初次进行的PCR,为尽量确保可以扩增出预期的PCR产物,可以把循环数设置为35。对于需进行半定量反应循环数一定要进行适当优化,使PCR反应没有达到平台期。