提示：第一次使用前请先在 15ml 漂洗液 WB 中加入 60ml 无水乙醇，充分混匀， 加入后请及时在方框打钩标记已加入乙醇，以免多次加入! 取样：取一根医用消毒棉签（手不要碰触脱脂棉部位），伸进口腔，紧靠脸颊内侧来回 刮拭 20 次（不时旋转棉棒），需充分接触口腔粘膜。 注意：避免用手触及棉签，采集前可先用清水轻轻漱口。为防止样本被食物或者饮料 污染，取样前 30 min 内应该避免进食或者饮水。
操作： 1、用剪刀将棉签部分从其杆上剪下，放入 2ml 离心管中，加入 400μl 裂解液 ML。
2、再加入 20μl 的蛋白酶 K (20mg/ml)溶液，立刻涡旋振荡充分混匀，56℃放置 30 min， 期间每 10 min 涡旋混匀 10 sec。
3、加入 400μl 结合液 CB，立刻涡旋振荡充分混匀，70℃放置 10 min（挤压去除拭子， 将尽可能多的裂解液转移至新的离心管中）。 如果拭子上细胞数量少，导致提取的基因组 DNA 产量过低, 可以在 400μl 结合液 CB 中加入 1μl Carrier RNA 储存溶液。
4、冷却后加 200μl 无水乙醇，立刻涡旋振荡充分混匀。简短离心以除去管盖内壁的液 滴，收集所有的液体到管底。（如果周围环境高于 25℃,乙醇需要冰上预冷后再加入）
5、将上一步混合物中加入一个吸附柱 AC 中（吸附柱放入收集管中），12,000rpm 离心 30-60 sec，倒掉收集管中的废液。
6、加入 500μl 抑制物去除液 IR，12,000rpm 离心 30 sec，弃废液。
7、加入 500μl 漂洗液 WB（请先检查是否已加入无水乙醇!），12,000rpm 离心 30 sec， 弃掉废液。
8、重复操作步骤 7。
9、将吸附柱 AC 放回空收集管中，12,000rpm 离心 2 min，将吸附柱置于室温放置数分 钟，以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液, 以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。
10、取出吸附柱 AC，放入一个干净的离心管中，在吸附膜的中间部位加 20-50μl 洗脱缓 冲液 EB（洗脱缓冲液事先在 65-70℃水浴中预热效果更好），室温放置 1 min， 12,000rpm 离心 1 min。将得到的溶液重新加入离心吸附柱中，室温放置 1 min， 12,000rpm 离 心 1 min 。 洗 脱 体 积 越 大 ， 洗 脱 效 率 越 高 ， 如 果 需 要 DNA 浓度较高，可以适当减少洗脱体积，但是最小体积不应少于 20μl，体积过 小降低 DNA 洗脱效率，减少 DNA 产量。（注意:DNA 产物应保存在-20℃，以防 DNA 降解） 注意：DNA 浓度及纯度检测 得到的基因组 DNA 片段的大小与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有 关。回收得到的 DNA 片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。 DNA 应在 OD260 处有显著吸收峰，OD260 值为 1 相当于大约 50μg/ml 双链 DNA、 40μg/ml 单链 DNA。OD260/OD280比值应为 1.7-1.9，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而 使用灭菌水比值会偏低，因为 pH 值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低
