c) 对新鲜的动物组织：先将剪切成小块新鲜组织或液氮保存的组织放入 10mL 或 15 mL 塑料离心管中，每 50-100 mg 组织加 1 mL 新鲜配制的裂解液，用匀浆器匀浆 30 秒左右。对肝、脾、胰、肾等细胞分裂十分旺盛的组织（细胞中含大量正在复制的 DNA），建议组织的使用量不要超过50 mg/ mL 裂解液，否则十分容易产生 DNA 污染。d) 对新鲜的植物组织：先将剪切成小块新鲜组织或液氮保存的组织放入 10mL 或 15 mL 塑料离心管中，每 50-100 mg 组织加 1 mL 新鲜配制的裂解液，用匀浆器匀浆 30 秒左右。
e) 对非冻型组织 RNA 保存液保存的动物或植物组织：先用纸吸去保存液后再剪切成小块，放入 10 mL-15 mL 塑料离心管中，每 50-100 mg 组织加 1 mL 新鲜配制的裂解液，用匀浆器匀浆 30 秒左右。
2. 将裂解物转移至一个干净的 1.5 mL 塑料离心管中，然后加入 0.2 倍体积的自备氯仿(1 mL 裂解物需 0.2 ml 氯仿)，振荡器上充分振荡混均 30 秒。
3. 14000 g 室温离心 5 分钟。
4. 将上层水相（约 0.6-0.8 mL）转移到一个宽口离心吸附柱中以吸附大RNA。注意：当样品的比重大时，可能上层是有机相，下层才是水相。两相之间含有 DNA 和蛋白质，避免触及，否则将产生蛋白质和 DNA 染。
5. 14000 g 室温离心半分钟，大 RNA 将与宽口离心吸附柱的膜结合，miRNA 将存在于穿透液中。注意：由于离心吸附柱的最大吸附能力为 40ug 动物 RNA，20 ug 植物 RNA，如果样品中的大 RNA 含量高于上面数
值，则大 RNA 也会进入穿透液，因此不要超载。
二、大 RNA 提取步骤
6. 加 0.7mL 通用洗柱液到宽口离心吸附柱中，14000 g 室温离心半分钟，弃穿透液。
7. 再加 0.3mL 通用洗柱液到宽口离心吸附柱中，14000 g 室温离心半分钟，弃穿透液。
8. 14000 g 室温离心半分钟以甩出残留液体。此步十分重要，否则残留的通用洗柱液会影响大 RNA 的使用。
9. 将宽口离心吸附柱转移到一干净的 RNase-free 离心管中，加入 50uLRNA 洗脱液。
10. 14000 g 室温离心半分钟，离心管中溶液即为大 RNA 样品，可以立即使用（电泳、测 OD，RT-PCR 等）或存放于-80℃待用。
三、miRNA 提取操作
11. 在第 5 步所得的穿透液中加等体积的溶液 C，所得混合液总体积约为 1.5mL），颠倒混匀。
12. 先转移 0.7mL 混合液到一窄口离心吸附柱中，室温静置 5 分钟。
13. 14000g 室温离心半分钟。注意：由于 miRNA 太短，挂膜效率较低，因此大约有 30%左右的 miRNA 还在穿透液中，如果需要回收这些 miRNA，
可以将收集管中的穿透液转移到一新离心管中保存，稍后按附录的沉淀法进一步回收。如果不需要则弃之。
14. 再转移 0.7mL 混合液到窄口离心吸附柱中，室温静置 5 分钟。
15. 14000 g 室温离心半分钟。将收集管中的穿透液和上步所得的穿透液汇集，（如果需要回收其中的 miRNA）或弃之（如果不需要回收其中的miRNA）
16. 加 0.7mL miRNA 专用洗柱液到窄口离心吸附柱中，14000 g 室温离心半分钟，弃穿透液。
17. 再加 0.3mL miRNA 专用洗柱液到同一窄口离心吸附柱中，14000 g 室温离心半分钟，弃穿透液。
18. 14000 g 室温离心半分钟以甩出残留液体。此步十分重要，否则残留的miRNA 专用洗柱液会影响 miRNA 的使用。
19. 将窄口离心吸附柱转移到一干净的 RNase-free 离心管中，加入 30uLRNA 洗脱液。
20. 14000 g 室温离心半分钟，离心管中溶液即为 miRNA 样品，可以立即使用（电泳、测 OD，RT-PCR 等）或存放于-80℃待用。
柱式大RNA-miRNA双提试剂盒 附录 1：从第 15 步所得穿透液中用沉淀法回收残留的 miRNA
21. 将穿透液在 14000 g 室温离心 20-30 分钟。
22. 小心吸弃上清。注意不要碰及管内的离心面，miRNA 将在此面形成沉淀。
23. 加入 1mL 自备的 75%乙醇，14000 g 室温离心 5 分钟。。
24. 小心吸弃上清。注意不要碰及管内的离心面。
25. 14000 g 室温离心半分钟，小心吸弃残留液体，不要碰及管内的离心面。
26. 加入 20uL RNA 洗脱液吹打溶解管底和管壁的 miRNA 沉淀。所得溶液
即为 miRNA 样品，可以立即使用或存放于-80℃待用。柱式大RNA-miRNA双提试剂盒
