PANC02细胞ggaOVAL基因过表达稳转株的构建与应用
1. 背景介绍
PANC02细胞是一种小鼠胰腺癌细胞系,广泛用于胰腺癌研究。ggaOVAL(鸡卵清蛋白基因)是一种常用于免疫学和肿瘤研究的模型抗原。构建ggaOVAL基因过表达的PANC02稳转株,可用于研究肿瘤免疫逃逸机制、抗原呈递及免疫治疗等领域。
2. 材料
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细胞系:PANC02细胞
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质粒:含有ggaOVAL基因的过表达载体(如pCDNA3.1-ggaOVAL)
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转染试剂:Lipofectamine 3000或其他高效转染试剂
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筛选抗生素:如嘌呤霉素(Puromycin)或G418
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培养基:RPMI-1640培养基,含10%胎牛血清(FBS)
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PBS缓冲液
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胰酶
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细胞冻存液:含10% DMSO的FBS
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PCR引物:用于验证ggaOVAL基因表达的引物
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Western blot试剂:用于检测ggaOVAL蛋白表达
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流式细胞术试剂:用于检测ggaOVAL蛋白的细胞表面表达(如抗ggaOVAL抗体)
3. 操作方法
3.1 质粒转染
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细胞培养:将PANC02细胞接种于6孔板中,培养至70-80%汇合度。
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质粒准备:将pCDNA3.1-ggaOVAL质粒与Lipofectamine 3000按比例混合,室温孵育15分钟。
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转染:将质粒-转染试剂复合物加入细胞中,轻轻混匀,37°C、5% CO2培养箱中培养6小时。
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换液:6小时后更换为新鲜培养基,继续培养48小时。
3.2 抗生素筛选
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抗生素处理:在转染48小时后,加入含有嘌呤霉素(或G418)的培养基(浓度根据预实验确定,通常为2-5 μg/mL嘌呤霉素或500-1000 μg/mL G418)。
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筛选:每2-3天更换一次含抗生素的培养基,持续筛选2-3周,直至未转染细胞全部死亡。
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单克隆筛选:将存活的细胞进行有限稀释,接种于96孔板中,培养至单克隆形成。
3.3 验证ggaOVAL过表达
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PCR验证:提取单克隆细胞的RNA,反转录为cDNA,使用ggaOVAL特异性引物进行qPCR,验证ggaOVAL基因的表达水平。
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Western blot验证:提取细胞总蛋白,进行Western blot检测,验证ggaOVAL蛋白的表达。
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流式细胞术验证:使用抗ggaOVAL抗体,通过流式细胞术检测ggaOVAL蛋白在细胞表面的表达。
3.4 稳转株的冻存与复苏
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冻存:将验证后的稳转株细胞用细胞冻存液重悬,分装至冻存管中,程序降温后置于液氮中长期保存。
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复苏:将冻存的细胞从液氮中取出,迅速放入37°C水浴中解冻,接种于含10% FBS的RPMI-1640培养基中,培养至细胞贴壁。
4. 发货方式
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细胞发货:将冻存的稳转株细胞置于干冰中,使用泡沫箱包装,确保运输过程中细胞始终处于低温状态。
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质粒发货:将质粒DNA溶于TE缓冲液中,置于冰袋中,使用泡沫箱包装,确保运输过程中质粒的稳定性。
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其他试剂:根据试剂的稳定性要求,选择适当的运输方式(如冰袋、干冰等)。
5. 应用
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肿瘤免疫研究:利用ggaOVAL过表达的PANC02细胞研究肿瘤抗原的免疫原性及免疫逃逸机制。
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免疫治疗模型:将该稳转株用于评估基于ggaOVAL抗原的免疫治疗策略(如疫苗、CAR-T细胞疗法等)。
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抗原呈递研究:研究ggaOVAL抗原在肿瘤细胞中的呈递过程及其对免疫细胞(如T细胞、树突状细胞)的激活作用。
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肿瘤微环境研究:探索ggaOVAL过表达对肿瘤微环境中免疫细胞浸润及功能的影响。
通过以上步骤,可以成功构建ggaOVAL基因过表达的PANC02稳转株,并应用于肿瘤免疫学及相关研究领域。